Non tutti gli ovociti sono uguali... ma ora puoi capire quali avranno maggiori probabilità di svilupparsi.

Aurora niPCT™ è il primo test non invasivo clinicamente validato che analizza ciò che conta davvero: il potenziale biologico dell'ovocita stesso. Analizzando le cellule del cumulo ooforo che circondano e sostengono naturalmente l'ovulo, Aurora niPCT™ decodifica i segnali molecolari con il più alto potenziale. A differenza delle valutazioni basate su immagini o colture, non fa supposizioni, ma misura. A differenza dei test genetici invasivi, non provoca alcun danno. E a differenza di molti strumenti emergenti, è già validato nella pratica clinica, dove ha aumentato significativamente i tassi di gravidanza e di nati vivi già al primo trasferimento.

La precisione di Aurora niPCT™ per una nascita viva per pazienti stimolate con

Risultati dei nostri studi

Aumento del tasso di nati vivi e del tasso di gravidanze cliniche per SET

I risultati del nostro più recente studio interventistico prospettico hanno dimostrato che nel braccio di test Aurora niPCT™ (anche chiamato Aurora Test) con trasferimento di singolo embrione (SET) al giorno 3, il tasso di gravidanza clinica è aumentato significativamente dal 27% al 63% nel primo ciclo di trasferimento di embrioni freschi. Rispetto al SET al giorno 5, l'aumento è stato dal 43% al 63%. Inoltre, è stato rilevato un tasso di nati vivi significativamente più elevato tra i trasferimenti al giorno 3. Si trattava di pazienti sottoposte a ICSI stimolate con HP-hMG. Nei bracci di controllo, le pazienti sono state sottoposte solo a valutazione morfologica. Leggi di più…

 

Aumento del tasso cumulativo di gravidanze

In uno studio clinico precedente, sono stati monitorati i tassi cumulativi e il test Aurora niPCT™ ha aumentato significativamente il tasso di gravidanza cumulativo dal 56% al 78% rispetto al gruppo di controllo del terzo giorno, quando la paziente si è sottoposta a cicli consecutivi. Leggi di più…

 

Aumento del tasso di gravidanze al primo tentativo e riduzione del tempo necessario per concepire.

 

I risultati del nostro studio clinico hanno mostrato un tempo di concepimento significativamente più breve nel gruppo sottoposto al test Aurora niPCT™ con trasferimento di un singolo embrione fresco o congelato rispetto al gruppo di controllo. Considerando tutte le pazienti con almeno due embrioni trasferibili, nel gruppo di controllo sono stati necessari tre trasferimenti aggiuntivi per ottenere la stessa gravidanza clinica.  Leggi di più…

 

Principio basato sulla scienza

Il test Aurora niPCT™ viene eseguito sulle cellule del cumulo ooforo che circondano gli ovociti della paziente e si basa sulla misurazione dell'espressione di geni specifici. Le cellule del cumulo vengono rimosse singolarmente da ciascun ovocita e l'RNA viene estratto da esse. Viene eseguita una PCR in tempo reale per i geni predittivi e due geni di controllo, che porta a una classificazione quantitativa di tutti gli ovociti. Scopri di più:

Aurora niPCT™ è applicabile per

• trasferimento freschi
• trasferimenti congelati
• cicli di donazione
• crioconservazione degli ovociti

Il test Aurora niPCT™ viene eseguito sulle cellule del cumulo ooforo di tutti gli ovociti di una paziente e segue la stessa procedura di analisi molecolare prevista per la ICSI. Gli ovociti vengono classificati e, in futuro, quelli con il punteggio più alto possono essere utilizzati per primi. Gli ovociti devono essere congelati singolarmente. Leggi di più

Tempistiche del servizio Aurora niPCT™

Qualora non si verifichi una gravidanza al primo trasferimento, gli embrioni soprannumerari, vitrificati singolarmente, verranno trasferiti in base al punteggio Aurora.

Se è previsto un eSET con campioni congelati, questi possono essere spediti in un secondo momento, ma devono pervenire al laboratorio di analisi cliniche di Fertiga almeno una settimana prima del trasferimento.

Se desideri maggiori informazioni sulla standardizzazione delle condizioni preanalitiche per test preimpianto non invasivi affidabili sulle cellule del cumulo, , contattaci per un white paper.

La nostra ricerca

1. Adriaenssens T, Van Vaerenbergh I, Van Leuven W, Coucke W, Montenegro S, Zheng W, D’Hooghe T, Van Landuyt L, De Munck N, Van Hecke E, Smitz J, Rosenthal A, Blockeel C.Live birth in patients stimulated with r-hFSH or r-hFSH: r-hLH is strongly associated with cumulus cell derived gene expression models. Reprod Biol Endocrinol. 2025;23(163). doi:1186/s12958-025-01480-2
2. Van Vaerenbergh I, Adriaenssens T, Coucke W, Van Landuyt L, Verheyen G, De Brucker M, Camus M, Platteau P, De Vos M, Van Hecke E, Rosenthal A, Smitz J. Improved clinical outcomes after non-invasive oocyte selection and Day 3 eSET in ICSI patients. Reprod Biol Endocrinol. 2021;19(1):26. doi: 1186/s12958-021-00704-5
3. Adriaenssens T, Van Vaerenbergh I, Coucke W, Segers I, Verheyen G, Anckaert E, De Vos M, Smitz J. Cumulus-corona gene expression analysis combined with morphological embryo scoring in single embryo transfer cycles increases live birth after fresh transfer and decreases time to pregnancy. J Assist Reprod Genet. 2019;36(3):433-443. doi: 1007/s10815-018-01398-2
4. Wathlet S, Adriaenssens T, Segers I, Verheyen G, Van Landuyt L, Coucke W, Devroey P, Smitz J. Pregnancy prediction in single embryo transfer cycles after ICSI using QPCR: validation in oocytes from the same cohort. PLoS One. 2013;8(4):e54226. doi: 1371/journal.pone.0054226
5. Wathlet S, Adriaenssens T, Segers I, Verheyen G, Janssens R, Coucke W, Devroey P, Smitz J. New candidate genes to predict pregnancy outcome in single embryo transfer cycles when using cumulus cell gene expression. Fertil Steril. 2012;98(2):432-9.e1-4. doi: 1016/j.fertnstert.2012.05.007
6. Wathlet S, Adriaenssens T, Segers I, Verheyen G, Van de Velde H, Coucke W, Ron El R, Devroey P, Smitz J. Cumulus cell gene expression predicts better cleavage-stage embryo or blastocyst development and pregnancy for ICSI patients. Hum Reprod. 2011;26(5):1035-51. doi: 1093/humrep/der036
7. Adriaenssens T, Segers I, Wathlet S, Smitz J. The cumulus cell gene expression profile of oocytes with different nuclear maturity and potential for blastocyst formation. J Assist Reprod Genet. 2011;28(1):31-40. doi: 1007/s10815-010-9481-9
8. Adriaenssens T, Wathlet S, Segers I, Verheyen G, De Vos A, Van der Elst J, Coucke W, Devroey P, Smitz J. Cumulus cell gene expression is associated with oocyte developmental quality and influenced by patient and treatment characteristics. Hum Reprod. 2010;25(5):1259-70. doi: 1093/humrep/deq049