);
Contactez-nous

Pour les prestataires de soins de santé

Tous les ovocytes ne sont pas égaux… mais vous pouvez désormais déterminer lesquels se développeront le mieux.

L’Aurora niPCT™ est le premier test non invasif, cliniquement prouvé, qui examine ce qui compte vraiment : le potentiel biologique de l’ovocyte lui-même. En analysant les cellules cumulus qui entourent et soutiennent naturellement l'œuf, Aurora niPCT™ décode les signaux moléculaires au potentiel le plus élevé. Contrairement aux évaluations basées sur l’imagerie ou la culture, il ne devine pas : il mesure. Contrairement aux tests génétiques invasifs, il est sans danger. Et contrairement à de nombreux outils émergents, il est déjà validé en pratique clinique, où il permet d'augmenter significativement les taux de grossesse et de naissances vivantes dès le premier transfert.

La précision du test Aurora niPCT™ pour une naissance vivante chez les patientes stimulées par

hMG (par exemple Menopur, Meriofert) 80%*
rFSH (par exemple Gonal-F, Rekovelle, Bemfola, Puregon) 70%**
rFSH+rLH (Pergoveris) 88%**

* après analyse des cellules cumulus de > 1000 ovocytes (Van Vaerenbergh et al., 2021 ; Adriaenssens et al., 2019) ; ** après analyse des cellules cumulus de > 1000 ovocytes (Adriaenssens et al., 2025).

Résultats de nos études

Augmentation du taux de naissances vivantes et du taux de grossesses cliniques pour le SET

clinical pregnancy rate increased significantly from 27 % to 63 % in the first fresh transfer cycle. Compared to day 5 SET — from 43 % to 63 %. Moreover, significant increase in live birth rate was proven between day 3 transfers.
Étude portant sur les résultats des patientes ayant bénéficié d'un transfert électif d'un seul embryon (eSET) et d'une ICSI.

Les résultats de notre dernière étude interventionnelle prospective ont montré que dans le bras test Aurora niPCT™ (également appelé Aurora Test) avec transfert d'embryon unique (SET) au jour 3, le taux de grossesses cliniques a augmenté de manière significative , passant de 27 % à 63 % lors du premier cycle de transfert d'embryon frais. À titre de comparaison, le SET au jour 5 est passé de 43 % à 63 %. De plus, une augmentation significative du taux de naissances vivantes a été observée avec les transferts effectués au jour 3. Ces patientes étaient des patientes ayant bénéficié d'une ICSI et d'une stimulation par HP-hMG. Dans les groupes témoins, seule une évaluation morphologique a été réalisée. En savoir plus →

 

Augmentation du taux de grossesse cumulé

Dans une étude clinique antérieure, les taux cumulatifs ont été suivis et le test Aurora niPCT™ a également augmenté de manière significative le taux cumulatif de grossesse de 56 % à 78 % par rapport au groupe témoin du jour 3 lorsque la patiente a subi des cycles consécutifs. En savoir plus →

 

Augmentation du taux de grossesse dès la première tentative et réduction du délai de conception

 

Results of clinical study showed a significantly shorter time-to-pregnancy.

Les résultats de notre étude clinique ont montré un délai de grossesse significativement plus court dans le groupe ayant bénéficié du test Aurora niPCT™ avec transfert d'embryons frais ou congelés, comparativement au groupe témoin. Chez les patientes ayant au moins deux embryons transférables, trois transferts supplémentaires ont été nécessaires dans le groupe témoin pour obtenir le même taux de grossesse clinique.  En savoir plus →

 

Principe fondé sur la science

Le test Aurora niPCT™ est réalisé sur les cellules du cumulus entourant les ovocytes d'une patiente et repose sur la mesure de l'expression de gènes spécifiques. Les cellules du cumulus sont prélevées individuellement sur chaque ovocyte et l'ARN est extrait de ces cellules. Une PCR en temps réel est effectuée pour les gènes prédictifs et deux gènes de contrôle, permettant un classement quantitatif de tous les ovocytes. En savoir plus :

Aurora niPCT™ Brochure ENG
Aurora niPCT™ Brochure NL
Aurora niPCT™ Brochure FR

Aurora niPCT™ est applicable pour

  • transferts frais
  • transferts congelés
  • cycles de don
  • congélation sociale d'ovocytes

Le test Aurora niPCT™ est réalisé sur les cellules du cumulus de tous les ovocytes d'une patiente et suit les mêmes analyses moléculaires que pour une patiente ayant recours à l'ICSI. Les ovocytes sont classés par ordre de qualité, et, ultérieurement, les ovocytes les mieux classés pourront être utilisés en priorité. Les ovocytes doivent être congelés individuellement. En savoir plus →

Flux de service Aurora niPT™

Procédure pour un nouvel eSET

En cas d'échec de la première tentative de grossesse, les embryons surnuméraires vitrifiés individuellement seront également transférés selon le score Aurora.

Si un eSET congelé est prévu, les échantillons peuvent être expédiés ultérieurement, mais doivent arriver au laboratoire d’analyses cliniques de Fertiga au moins une semaine avant le transfert.

Dépliant sur le flux de travail en laboratoire d'embryologie plus détaillé

Pour plus d'informations sur la normalisation des conditions pré-analytiques pour des tests fiables et non invasifs des cellules du cumulus avant implantation, contactez-nous pour obtenir un livre blanc.

Nos recherches

  1. Adriaenssens T, Van Vaerenbergh I, Van Leuven W, Coucke W, Montenegro S, Zheng W, D’Hooghe T, Van Landuyt L, De Munck N, Van Hecke E, Smitz J, Rosenthal A, Blockeel C.Live birth in patients stimulated with r-hFSH or r-hFSH: r-hLH is strongly associated with cumulus cell derived gene expression models. Reprod Biol Endocrinol. 2025;23(163). doi:1186/s12958-025-01480-2

  2. Van Vaerenbergh I, Adriaenssens T, Coucke W, Van Landuyt L, Verheyen G, De Brucker M, Camus M, Platteau P, De Vos M, Van Hecke E, Rosenthal A, Smitz J. Improved clinical outcomes after non-invasive oocyte selection and Day 3 eSET in ICSI patients. Reprod Biol Endocrinol. 2021;19(1):26. doi: 1186/s12958-021-00704-5

  3. Adriaenssens T, Van Vaerenbergh I, Coucke W, Segers I, Verheyen G, Anckaert E, De Vos M, Smitz J. Cumulus-corona gene expression analysis combined with morphological embryo scoring in single embryo transfer cycles increases live birth after fresh transfer and decreases time to pregnancy. J Assist Reprod Genet. 2019;36(3):433-443. doi: 1007/s10815-018-01398-2

  4. Wathlet S, Adriaenssens T, Segers I, Verheyen G, Van Landuyt L, Coucke W, Devroey P, Smitz J. Pregnancy prediction in single embryo transfer cycles after ICSI using QPCR: validation in oocytes from the same cohort. PLoS One. 2013;8(4):e54226. doi: 1371/journal.pone.0054226

  5. Wathlet S, Adriaenssens T, Segers I, Verheyen G, Janssens R, Coucke W, Devroey P, Smitz J. New candidate genes to predict pregnancy outcome in single embryo transfer cycles when using cumulus cell gene expression. Fertil Steril. 2012;98(2):432-9.e1-4. doi: 1016/j.fertnstert.2012.05.007

  6. Wathlet S, Adriaenssens T, Segers I, Verheyen G, Van de Velde H, Coucke W, Ron El R, Devroey P, Smitz J. Cumulus cell gene expression predicts better cleavage-stage embryo or blastocyst development and pregnancy for ICSI patients. Hum Reprod. 2011;26(5):1035-51. doi: 1093/humrep/der036

  7. Adriaenssens T, Segers I, Wathlet S, Smitz J. The cumulus cell gene expression profile of oocytes with different nuclear maturity and potential for blastocyst formation. J Assist Reprod Genet. 2011;28(1):31-40. doi: 1007/s10815-010-9481-9

  8. Adriaenssens T, Wathlet S, Segers I, Verheyen G, De Vos A, Van der Elst J, Coucke W, Devroey P, Smitz J. Cumulus cell gene expression is associated with oocyte developmental quality and influenced by patient and treatment characteristics. Hum Reprod. 2010;25(5):1259-70. doi: 1093/humrep/deq049